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        探索小鼠外周血血小板分離液試劑盒起源

        更新時間:2025-02-28      點擊次數:658

        小鼠外周血血小板分離液試劑盒


         

        規格200 mL/kit

        保存:本產品對光敏感,應該室溫避光儲存,保質期 2 年。無菌開封后,保存于室溫。

         

        組成:



        小鼠外周血血小板分離液全血及組織稀釋液

        細胞洗滌液

        200mL

        200mL

        200mL

        操作步驟:



        1. 取新鮮抗凝全血(EDTA、枸櫞酸鈉或肝素抗凝均可)或者去纖維蛋白血液,用等體積的全血及組織稀釋液或者PBS稀釋全血。

        2. 在離心管中加入至少5mL的分離液當血液的體積大于等于3mL,加入2倍體積分離液,但二者的總體積不能超過離心管的三分之二,否則會影響分離效果)。

        3. 將稀釋后的血液平鋪到分離液液面上方,注意保持兩液面界面清晰可以使用巴氏德吸管吸取血液,然后將血液小心的平鋪于分離液上,因為兩者的密度差異,將形成明顯的分層界面。如果樣品較多,加樣的時間較長,在離心之前出現紅細胞成團下沉屬正常現象)

        4. 室溫,水平轉子200-250g ,離心15min血液的體積越大所需的離心力越大,離心時間越長,最佳的分離條件需摸索

        5. 離心后,此時離心管中由上至下分為四層:最上層為富含血小板的血漿層;第三層為分離液層;分離液與血漿層之間是白色細胞層;第四層為紅細胞層。


        6. 小心的吸取富含血小板的血漿層到15mL潔凈的離心管中,加入10mLPBS或細胞洗滌液如果需要得到富含血小板的血漿, 可直接吸取,不再清洗)500g,離心20min

        7. 棄上清,5mLPBS或細胞洗滌液重懸血小板,500g,離心

        20min

        8. 棄上清,重懸備用。

        注意事項:

        A. 開封前顛倒混勻,本分離液為無菌產品,為延長分離液保存時間,請在無菌條件下啟封,避免微生物污染。。

        B. 分離液使用時應始終保持室溫(18~25℃),如室內溫度較低,可將分離液預熱。4℃或者是溫度較低的條件下離心,分離效果差。

        C. 吸取過多的血小板血漿層下層溶液會導致交界處白細胞混雜。

        D. 血液樣本最好為新鮮抗凝血(采血2 h以內),避免冷凍和冷藏。


         

         

         分離示意圖

        QQ圖片20250228082914.png



         

         

         

        富含血小板的血漿層細胞層

        分離液層

         

        紅細胞層


        E. 稀釋血液或洗滌細胞,不可使用含CaMg離子的緩沖液及培養液,降低細胞得率及純度。

        F. 部分塑料制品(如聚苯乙烯因其帶有的靜電作用,可能會導致細胞掛壁,影響分離效果。

        G. 血液樣本的粘稠度或者是溫度差異,可能會影響分離效果,可以對血液稀釋或者是調節離心轉數和離心時間, 摸索最佳的分離條件。

        H. 不同動物血液在不同比重分離液中的細胞離散系數及細胞帶電不同,用戶在制定分離液時應提供所需分離液的比重、動物種屬及被分離細胞的名稱。

        參考文獻:

        1. Boyum A. Separation of leucocytes from blood and bone marrow. Scand J Clin Lab Invest Suppl. 1968; 97: 7.

         

        2. Ting A, Morris PJ. A technique for lymphocyte preparation from stored heparinized blood. Vox Sang. 1971 Jun; 20(6): 561-3.

        3. Boyum A. Separation of Blood Leucocytes, Granulocytes and Lymphocytes Tissue Antigens. 1974; 4(4): 269-74.

         

        4. Weisbart RH, Webb WF, Bluestone R, Goldberg LS. A simplified method for lymphocyte separation. Vox Sang. 1972; 23(5): 478-80.

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        6. B?yumA ,L?vhaugD ,TreslandL.Separation of leucocytes: improved cell purity by fine adjustments of gradient mediu m density and osmolality. Scand J Immunol. 1991 Dec; 34(6):697-712.

        7. Harris R, Ukaejiofo EO. Tissue typing using a routine one-step lymphocyte separation procedure. Br J Haematol. 1970 Feb; 18(2):229-35.

         


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