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        ATCC細(xì)胞培養(yǎng)指南(精簡(jiǎn)版)

        更新時(shí)間:2025-02-24      點(diǎn)擊次數(shù):804

        每天對(duì)待細(xì)胞比孝敬爹媽還用心,那真是捧在手里怕碎了,含在嘴里怕化了,看在眼里怕丟了。如果手里有一份來(lái)自機(jī)構(gòu) ATCC 的《細(xì)胞培養(yǎng)指南》,養(yǎng)細(xì)胞可就得心應(yīng)手多了。下面是細(xì)胞培養(yǎng)指南(精簡(jiǎn)版),值得收藏。


        綜述

        細(xì)胞要么在培養(yǎng)瓶表面貼壁生長(zhǎng)(錨定依賴性)要么懸浮生長(zhǎng)(非錨定依賴性)。細(xì)胞的生長(zhǎng)和分裂,通常遵循一個(gè)由四個(gè)階段組成的特征性增長(zhǎng)模式:停滯期,對(duì)數(shù)期(指數(shù)期),平穩(wěn)期(平臺(tái)期)和衰退期。

        停滯期——將細(xì)胞接種至培養(yǎng)瓶之后,細(xì)胞逐步恢復(fù)的同時(shí),緩慢生長(zhǎng)。
        對(duì)數(shù)期(指數(shù)期)——細(xì)胞進(jìn)入一個(gè)對(duì)數(shù)生長(zhǎng)的時(shí)期,一直持續(xù)到整個(gè)生長(zhǎng)表面被占滿或細(xì)胞密度超過(guò)培養(yǎng)基提供營(yíng)養(yǎng)的能力。
        平穩(wěn)期——細(xì)胞增殖減慢或停止。
        衰退期——如果不更換培養(yǎng)基且細(xì)胞數(shù)量不減少,細(xì)胞活力會(huì)下降,并出現(xiàn)細(xì)胞死亡。

        為了確保活力,遺傳穩(wěn)定性和表型穩(wěn)定,必須使細(xì)胞保持在對(duì)數(shù)期。這意味著細(xì)胞需要在進(jìn)入平穩(wěn)增長(zhǎng)階段之前,或在單層細(xì)胞長(zhǎng)成 100% 融合之前,或在懸浮細(xì)胞達(dá)到推薦的最大細(xì)胞密度之前定期進(jìn)行傳代培養(yǎng)。為每個(gè)細(xì)胞系繪制生長(zhǎng)曲線,對(duì)于測(cè)定該細(xì)胞系的生長(zhǎng)特性是必要的。

        凍存細(xì)胞復(fù)蘇

        培養(yǎng)一個(gè)新的細(xì)胞時(shí)要特別注意培養(yǎng)基一致性的問(wèn)題。雖然大多數(shù)細(xì)胞系可以在不止一種培養(yǎng)基中生長(zhǎng),但是當(dāng)培養(yǎng)基改變時(shí),細(xì)胞的性質(zhì)也會(huì)變化。來(lái)自于不同廠家的培養(yǎng)基,即使名字相同或類似,配方也略有差異。仔細(xì)閱讀說(shuō)明書(shū),配方,標(biāo)簽,確保使用正確的培養(yǎng)基。

        細(xì)胞復(fù)蘇時(shí),應(yīng)以最快速度融化凍存的細(xì)胞溶液,然后迅速與培養(yǎng)基混合,并接種到合適的細(xì)胞瓶中。

        復(fù)蘇程序

        1. 準(zhǔn)備細(xì)胞培養(yǎng)容器(如 T-75 細(xì)胞瓶),加入至少 10 ml 適當(dāng)?shù)呐囵B(yǎng)基,并平衡溫度及 pH。

        2. 從液氮罐中取出凍存管,并在 37℃(或適合該細(xì)胞的溫度)水浴中緩慢搖動(dòng)至冰晶融化(約 2 min),注意解凍過(guò)程要迅速。

        3. 從水浴中取出凍存管,浸泡或者噴撒酒精消毒。后續(xù)的操作,需在無(wú)菌操作臺(tái)中,并保證嚴(yán)格無(wú)菌。

        4. 擰開(kāi)凍存管蓋,將細(xì)胞懸液轉(zhuǎn)移至含有 9 ml 培養(yǎng)基的無(wú)菌離心管中。溫和離心 (125 g×10 min),棄去上清去除凍存保護(hù)劑。注意不要擾動(dòng)細(xì)胞層。加入 1-2 ml 培養(yǎng)基重懸細(xì)胞,緩慢吹打使細(xì)胞團(tuán)變松散。將細(xì)胞懸液轉(zhuǎn)移至含培養(yǎng)基的容器中充分混合。

        5.24 小時(shí)后,檢測(cè)細(xì)胞狀態(tài)。

        細(xì)胞傳代培養(yǎng)

        單層貼壁細(xì)胞的傳代培養(yǎng)

        為了保證單層貼壁細(xì)胞的對(duì)數(shù)生長(zhǎng),需要定期傳代。當(dāng)細(xì)胞生長(zhǎng)接近指數(shù)生長(zhǎng)后期 (匯合率大約 70% 到 90%),準(zhǔn)備傳代。針對(duì)傳代過(guò)程,ATCC 提供的產(chǎn)品說(shuō)明中,會(huì)推薦細(xì)胞傳代分配比例和補(bǔ)充培養(yǎng)基策略。

        單層貼壁細(xì)胞傳代,需要打斷細(xì)胞之間的連接。對(duì)于比較松散的連接,猛擊培養(yǎng)瓶側(cè)壁,可以分離細(xì)胞。很多情況下,需要胰蛋白酶/EDTA 的蛋白水解酶來(lái)消化。對(duì)于一些細(xì)胞系,需要采用刮等機(jī)械方法分離細(xì)胞。細(xì)胞分離成為單細(xì)胞懸液后,稀釋到適當(dāng)?shù)拿芏炔⑥D(zhuǎn)移到新的培養(yǎng)瓶中,在適當(dāng)?shù)纳L(zhǎng)培養(yǎng)基中,細(xì)胞將再貼壁生長(zhǎng)和分裂。

        由于每種細(xì)胞都是的,孵化時(shí)間和溫度、清洗次數(shù)或溶液配方可能會(huì)有所不同。分離過(guò)程中,應(yīng)用顯微鏡密切觀察細(xì)胞,以防止細(xì)胞損傷。這個(gè)過(guò)程根據(jù)容器使用合適的培養(yǎng)體積。

        懸浮細(xì)胞的傳代培養(yǎng)

        相對(duì)于單層貼壁細(xì)胞來(lái)說(shuō),懸浮細(xì)胞的傳代更具有優(yōu)勢(shì),單層貼壁細(xì)胞需要蛋白水解酶,會(huì)造成細(xì)胞損傷。而懸浮細(xì)胞可以使用稀釋的方法來(lái)傳代,細(xì)胞生長(zhǎng)沒(méi)有延遲,對(duì)實(shí)驗(yàn)室空間要求較小,傳代培養(yǎng)是線性放大的。比如細(xì)胞可以在發(fā)酵罐中培養(yǎng)。

        根據(jù)細(xì)胞類型,懸浮培養(yǎng)接種密度從 2×104 至 5× 105 活細(xì)胞/ml。收獲時(shí)細(xì)胞密度 2×106 細(xì)胞/ml。如果細(xì)胞接種密度過(guò)低,他們將經(jīng)歷增長(zhǎng)延遲階段,增長(zhǎng)非常緩慢甚至死亡。如果細(xì)胞密度過(guò)高,細(xì)胞可能耗盡培養(yǎng)基中營(yíng)養(yǎng),而突然
        si去

        細(xì)胞凍存

        隨著細(xì)胞被冷凍至冰點(diǎn)以下,懸液中冰晶和溶質(zhì)的濃度有所增加。如果冷卻過(guò)程中,胞內(nèi)水分可以滲出細(xì)胞,則可以減少胞內(nèi)冰晶。通常 1℃/min 的降溫速度可以促進(jìn)此過(guò)程。但是,水分的喪失會(huì)導(dǎo)致細(xì)胞收縮,當(dāng)這種收縮達(dá)到一定程度,又會(huì)導(dǎo)致細(xì)胞活性的劇烈下降。冷凍保護(hù)劑,如甘油或者二甲基亞砜(DMSO),可以緩解這種效應(yīng)。細(xì)胞凍存的標(biāo)準(zhǔn)程序是在含有冷凍保護(hù)劑的培養(yǎng)基中,將細(xì)胞緩慢冷凍至–70℃,然后將凍存管轉(zhuǎn)移到液氮中以保持低于–130℃ 的環(huán)境。

        有很多方法可以實(shí)現(xiàn) 1℃/min 的降溫速度。電腦控制的可編程電子降溫系統(tǒng)是較好的方式,可以精確保持降溫速度。這也是 ATCC 采用的方法。但這種設(shè)備價(jià)格較高。比較經(jīng)濟(jì)的方式是將凍存管放置于凍存盒中,在低于–70℃ 的冰箱中凍存 24 小時(shí)。之后再轉(zhuǎn)移至液氮長(zhǎng)期儲(chǔ)存。

        以下程序適用于大多數(shù)細(xì)胞。凍存培養(yǎng)基的配方請(qǐng)參考細(xì)胞說(shuō)明書(shū)。凍存時(shí),細(xì)胞應(yīng)處于指數(shù)生長(zhǎng)期。

        1. 凍存前先檢測(cè)細(xì)胞是否受到細(xì)菌、真菌、支原體和病毒的污染。如果確定有污染,應(yīng)將該細(xì)胞銷毀。

        2. 凍存培養(yǎng)基由培養(yǎng)基和 5%DMSO 組成。由于 DMSO 的溶解會(huì)放熱,所以不能向細(xì)胞懸液中直接加入未稀釋的 DMSO。

        3. 以溫和速度(125 g×10 min)離心收集細(xì)胞,并以 1×106-5×106 活細(xì)胞/ml 的密度重懸細(xì)胞。

        4. 在凍存管上標(biāo)記好細(xì)胞名稱,編號(hào)和凍存日期等信息。然后每管加入 1-1.8 ml 細(xì)胞懸液(視凍存管體積)并密封。

        5. 室溫條件下,將細(xì)胞在凍存培養(yǎng)基中平衡 15-40 min(勿超)。這段時(shí)間中,可以將細(xì)胞懸液等分加入凍存管中。

        6. 將凍存管置于已預(yù)冷至 4℃ 的程序降溫盒,之后置于-70℃(或更冷)的冰箱中至少 24 小時(shí)。或者使用已預(yù)冷至 4℃ 的可編程電子降溫系統(tǒng)。

        7. 將凍存管迅速轉(zhuǎn)移至液氮罐或者-130℃ 冰箱。

        8. 記錄凍存位置和過(guò)程細(xì)節(jié)等信息。

        9.24 小時(shí)后,取出一只凍存管并復(fù)蘇,以測(cè)定細(xì)胞活性和是否污染。


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